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Fechas del Curso

1ª convocatoria Abril:
· Lunes 12 de abril: 15.00h – 20.00h
· Martes 13 de abril: 9.00h – 20.00h

2ª convocatoria Abril:
· Viernes 16 de abril: 15.00h – 20.00h
· Sábado 17 de abril: 9.00h – 20.00h

1ª convocatoria Mayo:
· Lunes 31 de mayo: 15.00h – 20.00h
· Martes 1 de junio: 9.00h – 20.00h

2ª convocatoria Mayo:
· Viernes 4 de junio: 15.00h – 20.00h
· Sábado 5 de junio: 9.00h – 20.00h

1ª convocatoria Junio:
· Lunes 14 de junio: 15.00h – 20.00h
· Martes 15 de junio: 9.00h – 20.00h

2ª convocatoria Junio:
· Viernes 18 de junio: 15.00h – 20.00h
· Sábado 19 de junio: 9.00h – 20.00h

1ª convocatoria Julio:
· Lunes 26 de julio: 15.00h – 20.00h
· Martes 27 de julio: 9.00h – 20.00h

2ª convocatoria Julio:
· Viernes 30 de julio: 15.00h – 20.00h
· Sábado 31 de julio: 9.00h – 20.00h

1ª convocatoria Septiembre:
· Miércoles 1 de septiembre: 15.00h – 20.00h
· Jueves 2 de septiembre: 9.00h – 20.00h

2ª convocatoria Septiembre:
· Viernes 3 de septiembre: 15.00h – 20.00h
· Sábado 4 de septiembre: 9.00h – 20.00h

Objetivo del Curso de PCR

  • Comprender los fundamentos básicos y principios en los que se basan las técnicas de PCR y sus aplicaciones.
  • Conocer en profundidad los distintos tipos de PCR convencional y a tiempo real así como sus aplicaciones cualitativas y cuantitativas en investigación básica e industria farmacéutica.
  • Conocer, diseñar, utilizar e interpretar las últimas metodologías de PCR cuantitativa a tiempo final: PCR digital y PCR cuantitativa fluorescente.
  • Sesión práctica del curso de PCR hands-on experience.

Procedimiento de Inscripción

Una vez completado el formulario de incripción recibirás un email para la elección de fechas y confirmación de disponibilidad. A continuación, recibirás los pasos para proceder al pago. En el caso de desear una formación ad hoc para un grupo cerrado de 4-6 personas escribir a aromero@imereti.es

Temario del Curso

UNIDAD 1: FUNDAMENTOS BÁSICOS DE LA PCR

  • Fundamentos de reacción en cadena de la polimerasa.
  • Componentes del termociclador y funcionamiento científico-técnico.
  • Programación de los ciclos de las PCR.
  • Determinación de los materiales y reactivos para la elaboración de una correcta PCR: Muestra biológica de partida, selección del material genético a estudiar, diseño de primers, elaboración de la master mix…
  • La PCR como técnica de control de calidad en la industria farmacéutica. Tipos de medicamentos involucrados. Interpretación de los resultados obtenidos en el boletín de análisis de control de calidad.

UNIDAD 2: DISEÑO DE UNA PCR ESTÁNDAR

  • Concepto de PCR convencional.
  • Preparación de las muestras biológicas de partida. Procesamiento de muestras biológicas. Selección de muestras de control o referencia. Tipos de muestras biológicas y tipos de marcaje. Protocolo de preparación: Muestras de sangre periférica, células mesenquimales.
  • Programación del termociclador.
  • Definición de los productos de amplificación de la PCR.
  • Análisis de los productos amplificados: Electroforesis en gel.
  • Manejo e interpretación del software de análisis.
  • Variantes de la PCR estándar o convencional

UNIDAD 3: VARIANTES DE LA PCR ESTÁNDAR

  • Introducción a las variantes.
  • Fundamentos científico técnicos y diseño de la PCR anidada.
  • Fundamentos científico técnicos y diseño de la PCR múltiple.
  • Fundamentos científico técnicos y diseño de la PCR transcripción inversa (RT-PCR).

UNIDAD 4: PCR A TIEMPO REAL Y TÉCNICAS CUANTITATIVAS

  • Exportación de datos crudos del software.
  • Introducción a la PCR a tiempo real. Técnicas cuantitativas.
  • Concetos y fundamentos científico técnicos de la PCR cuantitativa a tiempo real (qPCR).
  • Conceptos, fundamentos y ventajas de la PCR digital (dPCR).
  • Conceptos, fundamentos y ventajas de la PCR cuantitativa fluorescente (qfPCR).

UNIDAD 5: APLICACIONES DE LA PCR

  • Aplicaciones en investigación biomédica básica.
  • Aplicaciones en la industria farmacéutica. Interpretación de la técnica según farmacopea.
  • Aplicaciones en el diagnóstico clínico.

UNIDAD 6: SESIÓN PRÁCTICA

  • Evaluación de diferentes muestras biológicas con posible carga viral.
  • Creación de ensayo de calibración: Puesta a punto de la técnica.
  • Preparación de la muestra biológica.
  • Diseño de primers.
  • El termociclador: Encendido, limpieza, mantenimiento, apagado.
  • Preparación de la muestra en adquisición.
  • Electroforesis en gel de agararosa.
  • El transiluminador: Encendido, limpieza, mantenimiento, apagado
  • Exportación de datos crudos del software.
  • Interpretación y modelaje de los datos obtenidos.
  • Elaboración de tablas de presentación de resultados.
  • Elaboración del informe final.

Información del Curso

  • diploma:
    Finalizado el curso se entregará un diploma acreditativo.
  • Duración:
    Duración equivalente a 15 horas. 65% hands-on. Plazo 2 días. 6 alumnos máximo.
  • Inscripciones:
    El curso se imparte presencial en las instalaciones de IMERETI.
  • Importe:
    Importe de la matrícula: 175 € Hasta fin de plazas
  • Ubicación:
    Edificio NET-PHARMA. Carretera Fuencarral 22. 28108. Alcobendas. Madrid.

Inscripción

    Nivel Estudios*: